SP600125  别名:JNK Inhibitor II; 1PMV; NSC75890; Pyrazolanthrone

目录号 M2076

SP600125是一种广谱JNK抑制剂,作用于JNK1, JNK2和JNK3时,IC50分别为40 nM, 40 nM和90 nM,比作用于MKK4选择性高10倍,比作用于MKK3, MKK6, PKB,和PKCα选择性高25倍,比作用于ERK2, p38, Chk1, EGFR等选择性高100倍。此外,SP600125与 Forskolin,Y-27632合用可将细胞特定的转化为人神经细胞(hciNs),显著提高重编程效率。

SP600125结构式

  CAS No.:129-56-6

规格 价格 库存状态
Free Sample (0.5-1 mg)  ¥ 0 现货
10mM*1mL in DMSO ¥ 585 现货
5mg ¥ 270 现货
10mg ¥ 416 现货
25mg ¥ 585 现货
50mg ¥ 675 现货
100mg ¥ 990 现货
*AbMole所有产品仅供有资质的科研机构或医药企业进行科学研究或药证申报用途,不能被用于人体和任何其它用途。我们不向任何个人或非科研性质的机构提供产品和服务。
客户使用AbMole的SP600125发表的文献

 

质量标准及产品资料
化学性质/溶解性/储存
分子量 220.23
分子式 C14H8N2O
CAS号 129-56-6
溶解性(仅列举部分溶剂) DMSO 16 mg/mL
储存条件 粉末型式       -20°C   3年;4°C   2年
溶于溶剂       -80°C   6个月;-20°C   1个月
运输方式 冰袋运输,根据产品的不同,可能会有相应调整。

*不同实验中用到的溶剂可能不同,具体实验所需溶剂及溶解方法请参考相关文献描述。

生物活性
SP600125是一种广谱JNK抑制剂,作用于JNK1, JNK2和JNK3时,IC50分别为40 nM, 40 nM和90 nM,比作用于MKK4选择性高10倍,比作用于MKK3, MKK6, PKB,和PKCα选择性高25倍,比作用于ERK2, p38, Chk1, EGFR等选择性高100倍。SP600125是ATP竞争性的c-Jun氨基末端激酶(JNK)选择性抑制剂,IC50为40 nM 到90 nM。SP600125作用于Jurkat T细胞,抑制c-Jun磷酸化,IC50为5 μM 到10 μM。SP600125作用于CD4+细胞, 如从人脐血或外周血分离的Th0细胞,抑制细胞活化和分化,且抑制炎症基因 COX-2, IL-2, IL-10, IFN-γ,和TNF-α的表达, IC50为5 μM 到 12 μM。此外,SP600125与 Forskolin,Y-27632合用可将细胞特定的转化为人神经细胞(hciNs),显著提高重编程效率。
实验参考
蛋白/细胞实验

下述溶液配置方法仅为基于分子量计算出的理论值。不同产品在配置溶液前,需考虑其在不同溶剂中的溶解度限制。

浓度/溶剂体积/质量 1 mg 5 mg 10 mg
1 mM 4.5407 mL 22.7035 mL 45.4071 mL
5 mM 0.9081 mL 4.5407 mL 9.0814 mL
10 mM 0.4541 mL 2.2704 mL 4.5407 mL

*吸湿的DMSO对产品的溶解度有显著影响,请使用新开封的DMSO;
 请根据产品在不同溶剂中的溶解度选择合适的溶剂配制储备液;一旦配成溶液,请分装保存,避免反复冻融造成的产品失效。


质量   浓度   体积   分子量*
 =   x   x 

细胞系 A549 cells
方法 Cell viability assay.
Cell viability was evaluated using the Cell Counting kit (CCK)-8 assay (AbMole). In brief, the cells were seeded into 96-well plates at a density of 3×103 cells/well and left to adhere overnight. The cells were then incubated with or without 0–40 nM SP600125. Then, 100 μl CCK-8 was added and incubated in the dark at 37°C for 3 h. The absorbance was determined using the MRX II microplate reader (Dynex, Chantilly, VA, USA) at a wavelength of 450 nm.
浓度 0~40 nM
处理时间 24 h

* 上述方法来自公开文献,仅供相同目的实验参考。如实验目的、材料、方法不同,请参考其他文献。

动物实验

建议您制定动物给药及实验方案时,尽量参考已发表的相关实验文献(溶剂种类及配比众多,简单地溶解目的化合物,并不能解决动物给药依从性、体内生物利用度、组织分布等相关问题,未必能保证目的化合物在动物体内充分发挥生物学效用)。
体内实验的工作液,建议您现用现配,当天使用;如在配制过程中出现沉淀、析出现象,可以通过超声和(或)加热的方式助溶。
切勿一次性将产品全部溶解。


动物实验方案计算器

请在下面的计算器中,输入您的动物实验相关数据并点击计算,即可得到该实验的总需药量和工作液终浓度。
例如您给药剂量是10 mg/kg,平均每只动物的体重为20 g,每只动物的给药体积是100 μL,动物数量为20只,则该动物实验的总需药量为4 mg,工作液终浓度为2 mg/mL。

mg/kg
uL
该动物实验的总需药量为 mg
工作液终浓度2 mg/mL

1:鉴于实验过程的损耗,建议您至少多配1-2只动物的量;
2:为该产品最终给药时的浓度。


动物模型 Female CD-1 mice
配制 30% PEG-400/20% polypropylene glycol/15% Cremophor EL/5% ethanol/30% saline
剂量 0, 12, 24, and 36 h, 15 mg/kg
给药处理 s.c.

* 上述方法来自公开文献,仅供相同目的实验参考。如实验目的、材料、方法不同,请参考其他文献。

延伸阅读 (仅做信息扩展,不作实验参考)

SP600125JNK Inhibitor IIAbMoleM2076是一种广泛应用于基础研究中的c-Jun N末端激酶(JNK特异性抑制剂,通过抑制JNK的磷酸化活性,调控下游如c-JunATF-2等转录因子的活化,从而影响细胞凋亡、周期、分化及炎症反应等多种生物学过程。

在细胞实验中,SP600125CAS No.129-56-6的使用浓度范围较广。例如,在人神经母细胞瘤SH-SY5Y细胞中,30 μM 的SP600125可显著抑制JNK磷酸化并保护细胞免受异氟烷诱导的损伤[1];在MG-63Saos-2骨肉瘤细胞中,5 μM的SP600125被用于细胞癌变机制研究[2]SP600125NSC75890在大鼠心肌细胞H9c2中,以剂量依赖方式抑制高尿酸(HUA)诱导的脂肪积累及脂ogenic基因表达[3]SP600125MC3T3-E1成骨前体细胞中,可逆转镉诱导的Runx2下调并提升细胞存活率[4]10 μM SP600125在人胶质母细胞瘤细胞(GBMCs)中,处理24小时显著抑制增殖并上调HIF-1αBMP4表达[5]SP600125MH7A类风湿关节炎滑膜成纤维细胞中,还能有效抑制MMP-3表达,提示JNK/MMP通路可能是关节炎研究的新靶点[6]SP6001251PMV在肺上皮细胞中,阻断AREG 诱导的c-Jun磷酸化及上皮-间质转化(EMT)过程[7];在HPDLSCs(牙周膜干细胞)中,SP600125可逆转Wnt5a 对成骨分化的抑制作用[8]SP600125BMSCs(骨髓间充质干细胞)中,减轻TNF-α 诱导的p53caspase-9/-3上调,改善细胞迁移能力[9]

SP600125JNK Inhibitor II在动物实验中,常通过腹腔注射(i.p.给药,少部分为脑室注射(i.c.v.)给药,剂量多为10–50 mg/kg。例如,在RAG-2−/−小鼠A673肉瘤模型中,50 mg/kg剂量显著抑制肿瘤生长并降低VEGF表达与微血管密度(MVD),同时提高凋亡指数[10];在大鼠局灶性脑缺血再灌注(MCAO)模型中,i.c.v.给予SP600125可减轻脑梗死体积并改善行为异常[11]SP600125在心肌缺血再灌注损伤大鼠模型中,与Ulinastatin乌司他丁联用可降低p-JNK表达并减少心肌细胞凋亡[12]

综合来看,SP600125AbMoleM2076作为JNK通路的关键工具化合物,在多种细胞系(包括SH-SY5YU2OSPC12等)及小鼠、大鼠等动物模型中,为解析JNK信号在细胞命运决定、应激响应及组织稳态维持中的作用提供了重要实验工具

范例详解

Mol Med. 2025 May 15;31(1):190.

科研人员在上述文章中使用了AbMoleSP600125M2076。实验人员探究了脂质运载蛋白-2LCN2)介导铁死亡机制在光诱导光感受器退化中的作用,结果显示:光暴露显著诱导LCN2在光感受器细胞和视网膜中的表达,LCN2通过增加细胞内Fe²⁺水平和激活JNK通路,抑制SLC7A11-GSH-GPX4轴,从而诱导铁死亡。SP600125是一种选择性JNK抑制剂,通过阻断JNK通路激活,证实了上述发现。

 

1. LCN2 regulated ferroptosis in 661 W photoreceptor cells by modulating the JNK pathway[13].

参考文献及鸣谢

 

[1] Yang, Z.; Lv, J.; Lu, X.; et al. Emulsified isoflurane induces release of cytochrome C in human neuroblastoma SHSY-5Y cells via JNK (c-Jun N-terminal kinases) signaling pathway. Neurotoxicology and teratology 2018, 65, 19-25.

[2] Wang, L.; Wang, J.; Chu, X.; et al. Cholesterol and steroid synthesis pathways may be involved in the inhibition of osteosarcoma cell viability by calcium-sensing receptor antagonism. PeerJ 2026, 14, e20546.

[3] Xie, D.; Zhao, H.; Lu, J.; et al. High uric acid induces liver fat accumulation via ROS/JNK/AP-1 signaling. American journal of physiology. Endocrinology and metabolism 2021, 320 (6), E1032-e1043.

[4] Ou, L.; Wang, H.; Wu, Z.; et al. Effects of cadmium on osteoblast cell line: Exportin 1 accumulation, p-JNK activation, DNA damage and cell apoptosis. Ecotoxicology and environmental safety 2021, 208, 111668.

[5] Kose, C.; Uslu, S.; Calik-Kocaturk, D.; et al. JNK Inhibition Modulates the Cytoskeleton, Hypoxia, and Neurogenesis on the Protein Level in Glioblastoma Cells and Astrocytes: An Immunofluorescence Study. Turkish neurosurgery 2023, 33 (6), 982-989.

[6] Kanai, T.; Kondo, N.; Okada, M.; et al. The JNK pathway represents a novel target in the treatment of rheumatoid arthritis through the suppression of MMP-3. Journal of orthopaedic surgery and research 2020, 15 (1), 87.

[7] Cheng, W. H.; Kao, S. Y.; Chen, C. L.; et al. Amphiregulin induces CCN2 and fibronectin expression by TGF-β through EGFR-dependent pathway in lung epithelial cells. Respiratory research 2022, 23 (1), 381.

[8] Hasegawa, D.; Wada, N.; Yoshida, S.; et al. Wnt5a suppresses osteoblastic differentiation of human periodontal ligament stem cell-like cells via Ror2/JNK signaling. Journal of cellular physiology 2018, 233 (2), 1752-1762.

[9] Wei, B.; Bai, X.; Chen, K.; et al. SP600125 enhances the anti-apoptotic capacity and migration of bone marrow mesenchymal stem cells treated with tumor necrosis factor-alpha. Biochemical and biophysical research communications 2016, 475 (4), 301-307.

[10] Huang, Y. C.; Pan, W.; Li, H.; et al. c-Jun NH2-terminal kinase suppression significantly inhibits the growth of transplanted breast tumors in mice. The Journal of international medical research 2020, 48 (6), 300060520929858.

[11] Yamazaki, Y.; Arita, K.; Harada, S.; et al. Activation of c-Jun N-terminal kinase and p38 after cerebral ischemia upregulates cerebral sodium-glucose transporter type 1. Journal of pharmacological sciences 2018, 138 (4), 240-246.

[12] Yang, Z. H.; Lu, Y. J.; Gu, K. P.; et al. Effect of ulinastatin on myocardial ischemia-reperfusion injury through JNK and P38 MAPK signaling pathways. European review for medical and pharmacological sciences 2019, 23 (19), 8658-8664.

[13] Tang, W.; Zhai, R.; Ma, J.; et al. Lipocalin-2-mediated ferroptosis as a target for protection against light-induced photoreceptor degeneration. Molecular medicine (Cambridge, Mass.) 2025, 31 (1), 190.






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