ER-Tracker Red是一种荧光染料，能与内质网高选择性结合，在低浓度下对细胞无毒性，具有荧光寿命高，消光系数好等特点。ER-Tracker 不适合对固定后细胞进行染色。Em: 615 nm，Ex: 587 nm。
ER-Tracker Red是一种荧光染料，能与内质网高选择性结合，在低浓度下对细胞无毒性，具有荧光寿命高，消光系数好等特点。ER-Tracker 不适合对固定后细胞进行染色。Em: 615 nm，Ex: 587 nm。
使用说明（仅供参考，请根据实验需求进行相应调整）：
一、ER-Tracker Red工作液的配制：
1. 取少量ER-Tracker Red按照1:1000的比例加入到ER-Tracker Red 稀释液中。例如取1μl ER-Tracker Red加入到1ml ER-Tracker Red 稀释液中。混匀后即为ER-Tracker Red工作液。
2. ER-Tracker Red工作液使用前需37℃预温育。
注：工作液中ER-Tracker Red的浓度可以根据实际情况进行适当调整，推荐的稀释比例调整范围为1:1000-1:3000。为降低背景，在染色效果可以接受的范围内，建议尽量使用较低浓度的ER-Tracker Red。
二、内质网的荧光标记：
1. 去除细胞培养液，用适量的溶液如HBSS with Ca2+ & Mg2+ (Hanks' Balanced Salt Solution with Ca2+ & Mg2+)洗涤生长在盖玻片上的细胞。注：HBSS with Ca2+ & Mg2+ (C0219)可以向碧云天订购；对于悬浮细胞的染色可以参考贴壁细胞的染色方法进行。
2. 去除洗涤液，加入步骤1配制好的并37℃预温育的ER-Tracker Red染色工作液，与细胞37℃共孵育15-30分钟。
3. 去除ER-Tracker Red染色工作液，用细胞培养液洗涤细胞1-2次。
4. 随后通常用荧光显微镜或激光共聚焦显微镜进行观察。此时可观察到内质网呈明亮的强荧光染色。
5. 如果经ER-Tracker Red染色后的细胞需要进行固定，可以使用4%甲醛37℃固定2分钟。固定后用适当的洗涤液洗涤2-3次，每次5分钟，随后可以进行复染或滴加适当的抗荧光淬灭封片液，最后封片观察。
注意：ER-Tracker Red染色的细胞不能用Triton X-100通透，Triton X-100通透处理会导致ER-Tracker Red的荧光染色消失。
| 分子量 | 915.23 |
| 分子式 | C44H42BClF2N6O7S2 |
| 性状 | Solid |
| 溶解性（25°C） | DMSO 10 mg/mL |
| 储存条件 | -20°C, protect from light |
| 运输方式 | 冰袋运输，根据产品的不同，可能会有相应调整。 |
*下述溶液配置方法仅为基于分子量计算出的理论值。不同产品在配置溶液前，需考虑其在不同溶剂中的溶解度限制。
| Concentration / Solvent Volume / Mass | 1 mg | 5 mg | 10 mg |
|---|---|---|---|
| 1 mM | 1.0926 mL | 5.4631 mL | 10.9262 mL |
| 5 mM | 0.2185 mL | 1.0926 mL | 2.1852 mL |
| 10 mM | 0.1093 mL | 0.5463 mL | 1.0926 mL |
| 小鼠 | 大鼠 | 兔 | 豚鼠 | 仓鼠 | 狗 | |
| 重量 (kg) | 0.02 | 0.15 | 1.8 | 0.4 | 0.08 | 10 |
| 体表面积 (m2) | 0.007 | 0.025 | 0.15 | 0.05 | 0.02 | 0.5 |
| Km 系数 | 3 | 6 | 12 | 8 | 5 | 20 |
| 动物 A (mg/kg) = 动物 B (mg/kg) × | 动物 B的Km系数 |
| 动物 A的Km系数 |
例如，依据体表面积折算法，将化合物用于小鼠的剂量20 mg/kg 换算成大鼠的剂量，需要将20 mg/kg 乘以小鼠的Km系数（3），再除以大鼠的Km系数（6），得到化合物用于大鼠的等效剂量为10 mg/kg。
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