AbMole HEK293无血清培养基是一款用于 HEK293 类细胞悬浮培养和转染过程的无血清、无蛋白、无动物源的化学成分限定培养基。产品中含有 HEPES、碳酸氢钠、氨基酸、维生素、酚红、微量元素、F-68 等有利于 HEK293 类细胞生长和表达的组分。
AbMole HEK293无血清培养基是一款用于 HEK293 类细胞悬浮培养和转染过程的无血清、无蛋白、无动物源的化学成分限定培养基。产品中含有 HEPES、碳酸氢钠、氨基酸、维生素、酚红、微量元素、F-68 等有利于 HEK293 类细胞生长和表达的组分。
产品在使用前需加入 L-谷氨酰胺一起使用。
产品特点
无血清、无蛋白、无动物源且化学成分明确
转染效率高，适用于HEK293类细胞悬浮培养和转染
质控严格，性能稳定
使用说明
1. 使用建议：
1.1 常规换液或传代时，从 4℃冰箱取出的培养基可立刻使用，无需预热至室温或 37℃；
1.2 此款培养基中含 2mM L-谷氨酰胺，可根据使用场景适当补加。建议蛋白表达和病毒生产时可 补加 L-谷氨酰胺使终浓度达到 4~6mM；
1.3 无需离心换液，可直接将细胞悬液依照所需比例兑入培养液中；
1.4 建议传代后的细胞密度控制在 5~10×105 个/mL。
注意：培养 HEK293 类细胞的建议，可根据具体实际情况进行调整。
2. HEK293 悬浮细胞复苏及培养：
2.1 材料准备：HEK293 无血清培养基、15mL 无菌离心管、无菌移液管、无菌枪头、无菌摇瓶、 L-谷氨酰胺等；
2.2 在超净台内取 8mL HEK293 无血清培养基加入 15mL 无菌离心管中备用；
2.3 从液氮罐中快速取出待复苏 HEK293 细胞，放入 37℃水浴锅中慢慢摇晃 2 分钟之内融化；
2.4 将冻存管表面酒精消毒后放入超净台，用移液枪将细胞液转入之前备用的离心管中；
2.5 150× g 离心 5 分钟；
2.6 弃上清，用手指轻弹离心管底使细胞分散，加入 2mL 培养基后用移液枪轻轻吹打使细胞分散；
2.7 将细胞转移至已加入 18mL HEK293 无血清培养基的 125mL 摇瓶中，可根据实际情况适当补加 L-谷氨酰胺；
2.8 将摇瓶置于二氧化碳培养箱中培养（37℃，5%二氧化碳浓度，摇床 120rpm 或根据实际情况调 节）3~4 天，确定细胞密度和细胞活率。
注意：细胞活力在复苏 24 小时可能会有轻微降低，但应保持在 70%以上；复苏 4~7 天达到 90% 以上。
3. HEK293 悬浮细胞传代：
3.1 材料准备: HEK293 无血清培养基、无菌离心管、无菌移液管、无菌枪头、无菌摇瓶、L-谷氨 酰胺等；
3.2 传代前准备：
3.2.1 准备好将要使用的无菌摇瓶；
3.2.2 从培养箱中取出细胞，注意取出前拧紧瓶盖，用酒精棉球擦拭显微镜的台面，再在镜下观 察细胞；
3.2.3 观察细胞是否被污染，正常的细胞培养基较为澄清， 若观察到培养基颜色变黄且浑浊则 表示细胞已被污染，应及时处理。其次是观察细胞的生长状态，生长状态良好的细胞悬液较为 均一，无絮状或块状物体，否则细胞可能被污染；
3.2.4 计数，若细胞密度达到 4~6×106个/mL 时，应进行传代处理。
3.3 细胞传代：
3.3.1 无需离心换液，可直接将细胞悬液依照所需比例兑入新鲜 HEK293 无血清培养基中；
3.3.2 依据具体应用场景可同时按比例加入适当量的 L-谷氨酰胺；
3.3.3 传代后的细胞密度应控制在 5~10×105个/mL；
3.3.4 一般每周（7 天）需传代 2~3 次；
3.3.5 将摇瓶置于二氧化碳培养箱中培养（37℃，5%二氧化碳浓度，摇床 120rpm 或根据实际情 况调节）。
4. HEK293 悬浮细胞冻存：
4.1 制备二甲基亚砜（DMSO）细胞冻存液，现用现配；
4.2 将细胞培养至对数生长期（密度约为 4~6×106 个/mL），计数并离心收集细胞；
4.3 用细胞冻存液将离心好的细胞以 10×106个/mL 的密度重悬；
4.4 将适当量的细胞悬液分装到标记好名称和日期等信息的冻存管内，拧紧管盖；
4.5 将冻存管放置梯度降温盒中并置于-80℃冰箱中缓慢降温；
4.6 次日将冻存管转移至液氮内长期保存。此过程需尽可能快速完成（建议在 2 分钟内）。
| 储存条件 | 2-8°C, protect from light |
| 运输方式 | 冰袋运输，根据产品的不同，可能会有相应调整。 |
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